Histopatologista analyysia ja erilaisia kuvantamistekniikoita (esim. MRI, IVUS, TT) on käytetty valtimoiden seinien muutosten etsimiseen ja ateroskleroottisten vaurioiden muodostumisen tutkimiseen. Histopatologisilla menetelmillä muutoksia voidaan tutkia yksittäisten solujen tasolla, mutta nämä menetelmät ovat rajoittuneet pieneen määrään markkereita kerrallaan (3-5 proteiinia ja/tai mRNA:ta). Markkereiden rajoitetun määrän takia näillä menetelmillä ei pystytä erottelemaan hienovaraisia eroja solujen fenotyypeissä. Kuvantamistekniikat ovat noninvasiivisia, mutta niiden resoluutio on liian alhainen yksittäisten solujen tutkimiseen. Ateroskleroottisten vaurioiden mikroanatomian tutkimiseen tarvitaan siis lisäksi uudempia tekniikoita.

Moderni rinnakkaissekvensointi yhden solun RNA:sta (scRNA-seq) mahdollistaa satojen transkriptien tunnistamisen yksittäisistä soluista, mutta tällä menetelmällä ei saada tietoa solujen sijainnista kudoksessa. Paikkatranskriptomiikan tekniikat sen sijaan määrittävät tarkasti transkriptien sijainnin kudoksessa, mutta niillä ei pystytä määrittämään solutyyppiä, josta nämä transkriptit ovat peräisin. Tavoitteenamme on yhdistää scRNA-sekvensointidatan ja paikkatranskriptomiikan vahvuudet ateroskleroottisten vaurioiden mikroanatomian tutkimuksessa. Näiden menetelmien tuottaman datan yhdistäminen mahdollistaa solujen biologisen identiteetin ja sijainnin selvittämisen.

Tuoreessa julkaisussa (Depuydt et al 2020) selvitimme ihmisen ateroskleroottisista vaurioista löytyvien 14 eri solutyypin molekulaariset ominaisuudet scRNA-seq-analyysilla. Tuhansien yksittäisten solujen molekulaarinen profilointi on mahdollistanut sellaisten markkereiden valitsemisen, joilla pystytään paikallistamaan ja kvantitoimaan solutyypit, jotka kommunikoivat keskenään erityyppisissä ateroskleroottisissa vaurioissa. Laajennusmikroskopia (engl. expansion microscopy) on uusi menetelmä paikkatranskriptomiikassa, ja sen avulla voidaan erottaa kymmeniä ja jopa satoja ilmennettyjä geenejä samanaikaisesti kudosnäytteestä käyttämättä superresoluutiomikroskooppia.

Projektissa mukana

• Einari Aavik, Seppo Ylä-Herttuala

Yhteistyökumppanit

• Tiit Örd

Julkaisuja

• Depuydt MAC, Prange KHM, Slenders L, Örd T, Elbersen D, Boltjes A, de Jager SCA, Asselbergs FW, de Borst GJ, Aavik E, Lönnberg T, Lutgens E, Glass CK, den Ruijter HM, Kaikkonen MU, Bot I, Slütter B, van der Laan SW, Yla-Herttuala S, Mokry M, Kuiper J, de Winther MPJ, Pasterkamp G. Microanatomy of the Human Atherosclerotic Plaque by Single-Cell Transcriptomics. Circ Res. 2020 Nov 6;127(11):1437-1455.

Suomen Akatemian rahoittamassa COVID-19-rokotekehitysprojektissa tavoitteenamme on kehittää adenovirusvektoripohjainen rokote SARS-CoV-2-virusta vastaan. Adenovirusvektori ilmentää osaa viruksen piikkiproteiinista. Kun rokote annetaan nenäsumutteena, sen odotetaan tuottavan vahvan immuunivasteen virukselle.

Projektissa mukana

• Emma Koivulehto, Ahmed Tawfek, Aino Sormunen, Erika Gurzeler-Tiihonen, Yegor Korzyukov, Nihay Laham-Karam, Tuija Kekarainen, Petri Mäkinen, Seppo Ylä-Herttuala

Yhteistyökumppanit

• Kalle Saksela, Kari Alitalo

Tutkimme pahanlaatuisia aivokasvaimia. Glioblastoomaan keskittyvissä projekteissamme selvitämme sen ominaispiirteitä ja pyrimme löytämään uusia syövän merkkiaineita. Lisäksi mallinnamme sairautta monipuolisin lähestymistavoin erityisesti potilasperäisen materiaalin avulla. Tutkimme myös uusia immunoterapeuttisia hoitoja. Merkkiaineista saatava tieto voi hyödyttää potilasdiagnostiikkaa ja auttaa valitsemaan parempia ja henkilökohtaisempia hoitoja tulevaisuudessa.

Projektissa mukana

• Venla Olsson, Alisa Nousiainen, Minna Niittykoski, Seppo Ylä-Herttuala

Yhteistyökumppanit

• Tuija Kekarainen (KCT), Olli-Pekka Kämäräinen (Kuopion yliopistollinen keskussairaala)

Keskitymme uusien hoitomuotojen kehitykseen – toimimme väylänä tutkimuslaboratoriosta klinikkaan.Kehitämme uusia sydän- ja verisuonisairauksien tautimalleja (kuten sydänlihasiskeamian ja sydämen vajaatoiminnan eläinmalli), joita hyödynnämme tutkimuksessamme. Käytämme uusimpia kuvantamismenetelmiä, kuten angiografiatutkimusta ja PET-kuvantamista yhteistyössä Kuopion yliopistollisen sairaalan kanssa. Lisäksi tutkimme kehittämiemme sydänlihaksen virusvektorivälitteisten geeniterpioiden antotapoja, tehokkuutta ja soveltuvuutta suurissa eläinmalleissa.

Projektissa mukana

• Juho Pajula, Henna Korpela, Jaakko Lampela, Jonna Räisänen, Kaisa Valli, William Welsh, Niko Järveläinen, Satu Siimes, Minja Heikkilä, Anni Määttä, Hanna Wang, Peteri Mäkinen, Seppo Ylä-Herttuala

Yhteistyökumppanit

• Kuopion yliopistollinen sairaala, PET-keskus (TYKS)

Julkaisuja

• Pajula, J. J., Halonen, P. J., Hätinen, O. P., Ylä-Herttuala, S., & Nurro, J. (2020). Adenoviral Gene Transfer of Gremlin Modulates Vascular Endothelial Growth Factor-A-Induced Angiogenesis in Porcine Myocardium. Human Gene Therapy, 31(3–4), 211–218.
• Lähteenvuo J., Hätinen, O. P., Kuivanen, A., Huusko, J., Paananen, J., Lähteenvuo, M., … Ylä-Herttuala, S. (2020). Susceptibility to Cardiac Arrhythmias and Sympathetic Nerve Growth in VEGF-B Overexpressing Myocardium. Molecular Therapy, 28(7), 1731–1740.
• Hätinen, O. P. A., Lähteenvuo, J. E., Korpela, H. J., Pajula, J. J., & Ylä-Herttuala, S. (2019). Isolation of fresh endothelial cells from porcine heart for cardiovascular studies: A new fast protocol suitable for genomic, transcriptomic and cell biology studies. BMC Molecular and Cell Biology, 20(1).

Hiiri on tärkeä eläinmalli ihmisten sydän- ja verisuonitauteja tutkittaessa genomin samankaltaisuutensa ja nopean lisääntymistahtinsa vuoksi. Käyttämämme hiirimallit sisältävät useita sydän- ja veritautimalleja, kuten ateroskleroosin, sydämen vajaatoiminnan ja iskeemisten sydänsairauksien tautimallit. Näiden lisäksi käytämme pieneläinmalleja rasva-aineenvaihdunnan, silmän uudissuonimuodostuksen ja kakkostyypin diabetekseen liittyvien kardiovaskulaaristen komplikaatioiden tutkimiseen. Pyrimme selvittämään näiden sairauksien etenemistä ja kehittämään niihin uusia geeniterapioita.

Projektissa mukana

• Sanna Kettunen, Erika Gurzeler, Annakaisa Tirronen, Rahul Mallick, Sanna Koponen, Krista Hokkanen, Diana Törmä, Anna Slita, Galina Wirth, Durga Devi Thota, ja Seppo Ylä-Herttuala

Julkaisuja

• Gurzeler E, Aavik E, Laine A, Valkama T, Niskanen H, Huusko J, Kaikkonen MU, Ylä-Herttuala S. Therapeutic effects of rosuvastatin in hypercholesterolemic prediabetic mice in the absence on low density lipoprotein receptor. Biochim Biophys Acta Gen Sub. 2019 Feb;1863(2):481-490.
• Tirronen A, Vuorio T, Kettunen S, Hokkanen K, Ramms B, Niskanen H, Laakso H, Kaikkonen MU, Jauhiainen M, Gordts PLSM, Ylä-Herttuala S. Deletion of lymphangiogenic and angiogenic growth factor VEGF-D leads to severe hyperlipidemia and delayed clearance of chylomicron remnants.  Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2018 Oct;38(10):2327-2337.
• Kokki E, Karttunen T, Olsson V, Kinnunen K, Ylä-Herttuala S. Human vascular endothelial growth factor A(165) expression induces the mouse model of neovascular age-related macular degeneration.  Genes (Basel). 2018 Aug 31;9(9):438.
• Devi D,  Babu M, Mäkinen P, Kaikkonen MU, Heinäniemi M, Laakso H, Ylä-Herttuala E, Rieppo L, Liimatainen T, Naumenko N, Tavi P, Ylä-Herttuala S. Aggravated Postinfarct Heart Failure in Type 2 Diabetes Is Associated with Impaired Mitophagy and Exaggerated Inflammasome Activation. Am J Pathol. 2017 Dec;187(12):2659-2673.

Virusvektorit ovat tehokkaita työkaluja geeniterapiassa ja tutkimuskäytössä. Niiden parantamiseksi olemme hyödyntäneet ei-koodaavaa RNA:ta ja ei-koodaavaa genomia, kuten supertehostimia, kehittääksemme solutyyppeihin kohdennettuja vektoreita ja endogeenisten geenien ilmentymistä sääteleviä vektoreita. Verisuonet rakentuvat endoteelisoluista, joten terapeuttisten vektoreiden kohdentaminen näihin soluihin olisi hyödyllistä angiogeenisen geeniterapian kannalta. Siksi olemme tutkineet supertehostimia, joilla voisimme rajata siirtogeenien ilmentymisen vain endoteelisoluihin. Olemme löytäneet tehostimen, jonka avulla voimme ilmentää siirtogeenejä vain endoteelisoluissa. Lisäksi CRISPR/Cas9-tekniikkaa hyödyntämällä olemme muokanneet tehostimia ja löytäneet aiemmin tuntemattomia välittäjiä verisuonten muodostuksessa. Olemme tuottaneet endoteelisoluihin kohdennettuja vektoreita ja osoittaneet, miten vastaavia vektoreita voidaan kohdentaa myös muihin solutyyppeihin.

Jatkossa tutkimme mm. endoteeli- ja hypoksiaspesifistä sirkulaarista RNA:ta. Tämä on ei-koodaavan RNA:n muoto, jolla voi olla merkittävä rooli geenien säätelyssä, ja joka voi avata uusia mahdollisuuksia geeniterapiaan.

Projektissa mukana

• Isidore Mushimiyimana, Mustafa Beter, Tuisku Suoranta, Maria Barbiera, Hassan Sghayyar, Nihay Laham-Karam, Seppo Ylä-Herttuala

Yhteistyökumppanit

• Lena Claesson-Welsh, Minna Kaikkonen-Määttä, Johanna Laakkonen

Julkaisuja

• Mushimiyimana I, Niskanen H, Beter M, Laakkonen JP, Kaikkonen M, Ylä-Herttuala S., Laham-Karam N. Discovery and characterisation of functional endothelial super-enhancers. Nucleic Acids Research. 2021; 20;49(14):8078-8096.
• Mushimiyimana I, Tomas Bosch V, Niskanen H, Downes N, Ylä-Herttuala S, Laham-Karam N, Kaikkonen M. Genomic landscapes of VEGF family members in endothelial cells. Molecular and Cellular Biology 41(7): e0059420.
• Suoranta T, Laham-Karam N, Ylä-Herttuala S. Optimised protocol for accurate titration of AAV vectors. Human Gene Therapy. 2021;32(19-20).

Tutkimuksemme kohteena on turvallisten ja tehokkaiden geenikuljettimien kehittäminen ja käyttö geeniterapiassa. Tavoitteenamme on hoitaa erilaisia sairauksia, kuten sydämen vajaatoimintaa ja familiaalista hyperkolesterolemiaa. Pyrimme myös tuottamaan turvallisia ja mahdollisimman tehokkaita CAR T-soluja soluterapiakäyttöön.

Työkaluinamme käytämme pääasiassa lentivirusvektoreita, joita olemme muokanneet monella tasolla sopivammiksi geeniterapiatyökaluiksi. Vektorien pintamuokkauksella geeninsiirto rajoitetaan vain niihin solu- ja kudostyyppeihin, joissa geeniterapiaa tarvitaan, ja terapeuttisten geenien kohdennettu integraatio turvallisille alueille perimässä pienentää haitallisten mutaatioiden riskiä. Nämä muutokset vähentävät geeniterapian mahdollisia sivuvaikutuksia, ja näin parantavat geeniterapian turvallisuutta. Muokattujen lentivirusvektoreiden lisäksi käytämme myös CRISPR/Cas-tekniikkaa mm. kohdennettuun integraatioon.

Tuoreimmassa julkaisussamme tutkimme, kuinka endonukleaasin lisääminen lentivirusvektorin integraatiojärjestelmään vaikuttaa siirtogeenin sijaintiin solun perimässä. Osoitimme, että endonukleaasin sisältävät vektorit eivät integroidu proteiineja koodaaviin geeneihin samalla tavalla kuin villityypin vektorit, vaan siirtogeenit kohdentuivat tavoitealueelle yli 20 % tehokkuudella (Schenkwein et al, 2020).

Projektissa mukana

• Alisa Nousiainen, Pracheta De, Diana Schenkwein, Seppo Ylä-Herttuala

Yhteistyökumppanit

• KCT, Suomen Punainen Risti Veripalvelu

Julkaisuja

• Schenkwein D, Afzal S, Nousiainen A, Schmidt M, Ylä-Herttuala S. Efficient Nuclease-Directed Integration of Lentivirus Vectors into the Human Ribosomal DNA Locus. Mol Ther. 2020 Aug 5;28(8):1858-1875. doi: 10.1016/j.ymthe.2020.05.019. Epub 2020 May 23. PMID: 32504545; PMCID: PMC7403359.

Tutkimusryhmämme (eng. junior research group) keskittyy sydän- ja verisuonitautien hoitojen kehittämiseen. Tutkimuksessamme selvitämme tautimekanismeja sekä solujen välisiä vuorovaikutussuhteita ja tunnistamme potentiaalisia uusia hoitogeenejä. Tuoreessa julkaisussamme osoitimme ensimmäistä kertaa, että kasvutekijä BMP-6 vaikuttaa verisuonten uudismuodostukseen ja säätelee VEGFR2/Hippo-soluviestintäreittiä. Löydöstä voidaan hyödyntää verisuonten kasvua säätelevien hoitomuotojen kehityksessä.

Projektissa mukana

• Henna Ilmonen, Miika Kiema, Emma Luoto, Heidi Pulkkinen, Heta Rasinkangas, Suvi Jauhiainen, Johanna Laakkonen

Julkaisuja

• Pulkkinen HH, Kiema M, Lappalainen JP, Toropainen A, Beter M, Tirronen A, Holappa L, Niskanen H, Kaikkonen MU, Ylä-Herttuala S, Laakkonen JP. BMP6/TAZ-Hippo signaling modulates angiogenesis and endothelial cell response to VEGF. Angiogenesis. 2020 Oct 6. doi:10.1007/s10456-020-09748-4.

Some of our current grants:

Decision: 337120

Grant ID: 825670                                               Grant ID: 884382

Grant ID: 731532

Grant ID: 945473

Euro GCT Grant ID: 965241